1. 原理
1.1. 計算細胞數目可用血球計數盤或是Coulter counter 粒子計數器自動計數。
1.2. 血球計數盤一般有二個chambers，每個chamber 中細刻9 個1 mm2 大正方形，其中4 個角落之正方形再細刻16 個小格，深度均為0.1 mm。 當chamber 上方蓋上蓋玻片后，每個大正方形之體積為1 mm2 x 0.1 mm=1.0 x 10-4 ml。使用時，計數每個大正方形內之細胞數目，
乘以稀釋倍數，再乘以104，即為每ml 中之細胞數目。
1.3. 存活測試之步驟為dye exclusion，利用染料會滲入死細胞中而呈色，而活細胞因細胞膜完整，染料無法滲入而不會呈色。 一般使用藍色之trypan blue 染料，如果細胞不易吸收trypan blue，則用紅色之Erythrosin bluish。
2. 材料
2.1. 0.4 % w/v trypan blue (GibcoBRL 15250-061)
2.2. Erythosin bluish stain
取0.1g Erythrosin bluish (Sigma E-9259)及0.05g preservative methyl paraben(Sigma H-3647)溶于100 ml Ca++/Mg++ free saline
2.3. 血球計數盤及蓋玻片(Hemocytometer and coverslip)
2.4. 計數器(counter)
2.5. 低倍倒立顯微鏡
2.6. 粒子計數器(Coulter counter, Coulter Electronics)
3. 步驟
3.1. 取50ml 細胞懸浮液與50ml trypan blue (or Erythrosin bluish) 等體積混合均勻于1.5ml 小離心管中。
3.2. 取少許混合液(約15ml) 自血球計數盤chamber上方凹槽加入，蓋上蓋玻片，于100 倍倒立顯微鏡下觀察，活細胞不染色，死細胞則為藍色(或紅色- Erythrosin bluish)。
3.3. 計數四個大方格之細胞總數，再除4，乘以稀釋倍數(至少乘以2，因與trypan blue等體積混合)，最后乘以104， 即為每ml 中細胞懸浮液之細胞數。若細胞位于線上，只計上線與右線之細胞(或計下線與左線之細胞)。 4大格細胞總數×2×104/4 = 細胞數/ml
*每一大格的體積= 0.1cm × 0.1cm × 0.01cm = 10-4 ml
3.4. 若不用血球計數盤，可用Coulter counter 作自動計數，惟無法辨別死細胞或活細胞。
3.5. 范例： T75 monolayer culture 制成10ml 細胞懸浮液，取0.1 ml 溶液與0.1ml trypan blue 混合均勻于試管中，取少許混合液加入血球計數盤， 計數四大方格內之細胞數目。
活細胞數/方格：55 ,62, 49, 59
死細胞數/方格：5, 3, 4, 6
細胞總數= 243
平均細胞數/方格= 60.75
稀釋倍數= 2
細胞數/ml：60.75 x 104 x 2 = 1.22 x 106
細胞數/flask： 1.22 x 106 x 10ml = 12.2 x 106
存活率：225/243﹦92.6 %
